|
№
|
||||||
|---|---|---|---|---|---|---|
|
181
|
Патент 2522848
|
Изобретение относится к области бесконтактного взаимодействия пользователей с управляемыми устройствами. Техническим результатом является обеспечение детекции команд пользователя, отдаваемых с помощью взгляда, без необходимости точного определения пространственных координат взгляда и обеспечения значительного углового расстояния между управляющими позициями, а также без необходимости для пользователя точно фиксировать взгляд в заданных позициях. Пользователю указывают управляющие позиции и создают условия для появления в них стимулов в разное время. Для отдачи команды пользователь направляет взгляд в управляющую позицию, ожидает стимул и, увидев его, подает глазной жест. Регистрируют и анализируют движения глаз пользователя, выявляют и анализируют глазной жест. По моменту начала глазного жеста определяют стимул, в ответ на который он был подан, и соответствующую ему позицию, и выдают на управляемое устройство команду, ассоциированную с данной комбинацией глазного жеста и управляющей позиции. 1. Способ управления устройством с помощью глазных жестов в ответ на стимулы, состоящий в том, что пользователю указывают по меньшей мере одну управляющую позицию, с каждой управляющей позицией ассоциируют по меньшей мере один глазной жест, с каждой комбинацией управляющей позиции и ассоциированного с нею глазного жеста ассоциируют одну команду, создают условия, при которых в управляющих позициях в разное время появляются заданные зрительные стимулы, дают инструкцию пользователю для отдачи команды управляемому им устройству перевести взгляд в управляющую позицию, ассоциированную с данной командой, и после появления в ней заданного зрительного стимула подать глазной жест, регистрируют движения глаз пользователя, анализируют записи движений глаз пользователя с целью выявления глазного жеста и определения времени его подачи, и в случае, если выявлен глазной жест, время подачи которого соответствует времени появления стимула в одной из управляющих позиций, детектируют отдачу команды, ассоциированной с комбинацией данного глазного жеста и данной управляющей позиции, и выдают ее на управляемое устройство.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что условия, при которых в управляющих позициях в разное время появляются заданные зрительные стимулы, создают путем предъявления заданных зрительных стимулов в этих позициях в известные моменты времени.
3. Способ по п.2, отличающийся тем, что предъявление заданных зрительных стимулов в управляющих позициях организуют циклами, состоящими из предъявления такого стимула по одному разу в каждой из, по меньшей мере, двух управляющих позиций.
4. Способ по п.1, отличающийся тем, что, если моменты времени появления заданных зрительных стимулов заранее неизвестны, ведут регистрацию сигнала, несущего информацию о появлении таких стимулов, и на основе его анализа определяют моменты времени появления каждого такого стимула.
5. Способ по п.1, отличающийся тем, что подают звуковые сигналы, синхронизированные со зрительными стимулами, при этом используют одну и ту же высоту звука при появлении заданного зрительного стимула в одной и той же позиции и разную высоту - при появлении заданных зрительных стимулов в разных позициях.
6. Способ по п.1, отличающийся тем, что создают условия, при которых зрительные стимулы во всех управляющих позициях одинаковые.
7. Способ по п.1, отличающийся тем, что создают условия, при которых зрительные стимулы, по меньшей мере, в одной из управляющих позиций отличаются от зрительных стимулов в других управляющих позициях.
8. Способ по п.1, отличающийся тем, что пользователю указывают по меньшей мере одну позицию подтверждения, а подтверждающий глазной жест задают в форме саккады в позицию подтверждения.
9. Способ по п.8, отличающийся тем, что после детекции отданной команды ее обозначение показывают в позиции подтверждения.
10. Способ по п.8, отличающийся тем, что пользователю указывают не менее двух позиций подтверждения, а глазной жест задают в форме не менее двух саккад в позиции подтверждения.
11. Способ по п.8, отличающийся тем, что управляющие позиции помещают внутри видимой пользователю особой области, а пользователь получает инструкцию направлять взгляд внутрь этой особой области только тогда, когда он готовится отдать команду.
12. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрацию движений глаз пользователя производят путем видеорегистрации изображения глаз.
13. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрацию движений глаз пользователя производят путем регистрации электроокулограммы.
14. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрацию движений глаз пользователя производят путем регистрации сигналов мозгового происхождения.
15. Способ по п.1, отличающийся тем, что при анализе записей движений глаз пользователя определяют координаты взгляда непосредственно перед и после высокоамплитудных движений глаз.
16. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрируют положение головы пользователя и полученные данные используют при анализе записей движений глаз пользователя с целью выявления глазного жеста.
17. Способ по п.1, отличающийся тем, что наряду с регистрацией движений глаз у пользователя регистрируют сигнал мозгового происхождения, а отдаваемую команду устанавливают при использовании совместного анализа движений глаз и сигнала мозгового происхождения.
18. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют электроэнцефалограмму.
19. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют магнитоэнцефалограмму.
20. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют BOLD-сигнал.
21. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют NIRS-сигнал.
Основное назначение
Изобретение относится к области бесконтактного взаимодействия пользователей с управляемыми устройствами. Техническим результатом является обеспечение детекции команд пользователя, отдаваемых с помощью взгляда, без необходимости точного определения пространственных координат взгляда и обеспечения значительного углового расстояния между управляющими позициями, а также без необходимости для пользователя точно фиксировать взгляд в заданных позициях. Пользователю указывают управляющие позиции и создают условия для появления в них стимулов в разное время. Для отдачи команды пользователь направляет взгляд в управляющую позицию, ожидает стимул и, увидев его, подает глазной жест. Регистрируют и анализируют движения глаз пользователя, выявляют и анализируют глазной жест. По моменту начала глазного жеста определяют стимул, в ответ на который он был подан, и соответствующую ему позицию, и выдают на управляемое устройство команду, ассоциированную с данной комбинацией глазного жеста и управляющей позиции. 1. Способ управления устройством с помощью глазных жестов в ответ на стимулы, состоящий в том, что пользователю указывают по меньшей мере одну управляющую позицию, с каждой управляющей позицией ассоциируют по меньшей мере один глазной жест, с каждой комбинацией управляющей позиции и ассоциированного с нею глазного жеста ассоциируют одну команду, создают условия, при которых в управляющих позициях в разное время появляются заданные зрительные стимулы, дают инструкцию пользователю для отдачи команды управляемому им устройству перевести взгляд в управляющую позицию, ассоциированную с данной командой, и после появления в ней заданного зрительного стимула подать глазной жест, регистрируют движения глаз пользователя, анализируют записи движений глаз пользователя с целью выявления глазного жеста и определения времени его подачи, и в случае, если выявлен глазной жест, время подачи которого соответствует времени появления стимула в одной из управляющих позиций, детектируют отдачу команды, ассоциированной с комбинацией данного глазного жеста и данной управляющей позиции, и выдают ее на управляемое устройство.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что условия, при которых в управляющих позициях в разное время появляются заданные зрительные стимулы, создают путем предъявления заданных зрительных стимулов в этих позициях в известные моменты времени.
3. Способ по п.2, отличающийся тем, что предъявление заданных зрительных стимулов в управляющих позициях организуют циклами, состоящими из предъявления такого стимула по одному разу в каждой из, по меньшей мере, двух управляющих позиций.
4. Способ по п.1, отличающийся тем, что, если моменты времени появления заданных зрительных стимулов заранее неизвестны, ведут регистрацию сигнала, несущего информацию о появлении таких стимулов, и на основе его анализа определяют моменты времени появления каждого такого стимула.
5. Способ по п.1, отличающийся тем, что подают звуковые сигналы, синхронизированные со зрительными стимулами, при этом используют одну и ту же высоту звука при появлении заданного зрительного стимула в одной и той же позиции и разную высоту - при появлении заданных зрительных стимулов в разных позициях.
6. Способ по п.1, отличающийся тем, что создают условия, при которых зрительные стимулы во всех управляющих позициях одинаковые.
7. Способ по п.1, отличающийся тем, что создают условия, при которых зрительные стимулы, по меньшей мере, в одной из управляющих позиций отличаются от зрительных стимулов в других управляющих позициях.
8. Способ по п.1, отличающийся тем, что пользователю указывают по меньшей мере одну позицию подтверждения, а подтверждающий глазной жест задают в форме саккады в позицию подтверждения.
9. Способ по п.8, отличающийся тем, что после детекции отданной команды ее обозначение показывают в позиции подтверждения.
10. Способ по п.8, отличающийся тем, что пользователю указывают не менее двух позиций подтверждения, а глазной жест задают в форме не менее двух саккад в позиции подтверждения.
11. Способ по п.8, отличающийся тем, что управляющие позиции помещают внутри видимой пользователю особой области, а пользователь получает инструкцию направлять взгляд внутрь этой особой области только тогда, когда он готовится отдать команду.
12. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрацию движений глаз пользователя производят путем видеорегистрации изображения глаз.
13. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрацию движений глаз пользователя производят путем регистрации электроокулограммы.
14. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрацию движений глаз пользователя производят путем регистрации сигналов мозгового происхождения.
15. Способ по п.1, отличающийся тем, что при анализе записей движений глаз пользователя определяют координаты взгляда непосредственно перед и после высокоамплитудных движений глаз.
16. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрируют положение головы пользователя и полученные данные используют при анализе записей движений глаз пользователя с целью выявления глазного жеста.
17. Способ по п.1, отличающийся тем, что наряду с регистрацией движений глаз у пользователя регистрируют сигнал мозгового происхождения, а отдаваемую команду устанавливают при использовании совместного анализа движений глаз и сигнала мозгового происхождения.
18. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют электроэнцефалограмму.
19. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют магнитоэнцефалограмму.
20. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют BOLD-сигнал.
21. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют NIRS-сигнал.
|
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (RU)
Основное назначение
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (RU)
|
1. Способ управления устройством с помощью глазных жестов в ответ на стимулы, состоящий в том, что пользователю указывают по меньшей мере одну управляющую позицию, с каждой управляющей позицией ассоциируют по меньшей мере один глазной жест, с каждой комбинацией управляющей позиции и ассоциированного с нею глазного жеста ассоциируют одну команду, создают условия, при которых в управляющих позициях в разное время появляются заданные зрительные стимулы, дают инструкцию пользователю для отдачи команды управляемому им устройству перевести взгляд в управляющую позицию, ассоциированную с данной командой, и после появления в ней заданного зрительного стимула подать глазной жест, регистрируют движения глаз пользователя, анализируют записи движений глаз пользователя с целью выявления глазного жеста и определения времени его подачи, и в случае, если выявлен глазной жест, время подачи которого соответствует времени появления стимула в одной из управляющих позиций, детектируют отдачу команды, ассоциированной с комбинацией данного глазного жеста и данной управляющей позиции, и выдают ее на управляемое устройство.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что условия, при которых в управляющих позициях в разное время появляются заданные зрительные стимулы, создают путем предъявления заданных зрительных стимулов в этих позициях в известные моменты времени.
3. Способ по п.2, отличающийся тем, что предъявление заданных зрительных стимулов в управляющих позициях организуют циклами, состоящими из предъявления такого стимула по одному разу в каждой из, по меньшей мере, двух управляющих позиций.
4. Способ по п.1, отличающийся тем, что, если моменты времени появления заданных зрительных стимулов заранее неизвестны, ведут регистрацию сигнала, несущего информацию о появлении таких стимулов, и на основе его анализа определяют моменты времени появления каждого такого стимула.
5. Способ по п.1, отличающийся тем, что подают звуковые сигналы, синхронизированные со зрительными стимулами, при этом используют одну и ту же высоту звука при появлении заданного зрительного стимула в одной и той же позиции и разную высоту - при появлении заданных зрительных стимулов в разных позициях.
6. Способ по п.1, отличающийся тем, что создают условия, при которых зрительные стимулы во всех управляющих позициях одинаковые.
7. Способ по п.1, отличающийся тем, что создают условия, при которых зрительные стимулы, по меньшей мере, в одной из управляющих позиций отличаются от зрительных стимулов в других управляющих позициях.
8. Способ по п.1, отличающийся тем, что пользователю указывают по меньшей мере одну позицию подтверждения, а подтверждающий глазной жест задают в форме саккады в позицию подтверждения.
9. Способ по п.8, отличающийся тем, что после детекции отданной команды ее обозначение показывают в позиции подтверждения.
10. Способ по п.8, отличающийся тем, что пользователю указывают не менее двух позиций подтверждения, а глазной жест задают в форме не менее двух саккад в позиции подтверждения.
11. Способ по п.8, отличающийся тем, что управляющие позиции помещают внутри видимой пользователю особой области, а пользователь получает инструкцию направлять взгляд внутрь этой особой области только тогда, когда он готовится отдать команду.
12. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрацию движений глаз пользователя производят путем видеорегистрации изображения глаз.
13. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрацию движений глаз пользователя производят путем регистрации электроокулограммы.
14. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрацию движений глаз пользователя производят путем регистрации сигналов мозгового происхождения.
15. Способ по п.1, отличающийся тем, что при анализе записей движений глаз пользователя определяют координаты взгляда непосредственно перед и после высокоамплитудных движений глаз.
16. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрируют положение головы пользователя и полученные данные используют при анализе записей движений глаз пользователя с целью выявления глазного жеста.
17. Способ по п.1, отличающийся тем, что наряду с регистрацией движений глаз у пользователя регистрируют сигнал мозгового происхождения, а отдаваемую команду устанавливают при использовании совместного анализа движений глаз и сигнала мозгового происхождения.
18. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют электроэнцефалограмму.
19. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют магнитоэнцефалограмму.
20. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют BOLD-сигнал.
21. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют NIRS-сигнал.
Основное назначение
1. Способ управления устройством с помощью глазных жестов в ответ на стимулы, состоящий в том, что пользователю указывают по меньшей мере одну управляющую позицию, с каждой управляющей позицией ассоциируют по меньшей мере один глазной жест, с каждой комбинацией управляющей позиции и ассоциированного с нею глазного жеста ассоциируют одну команду, создают условия, при которых в управляющих позициях в разное время появляются заданные зрительные стимулы, дают инструкцию пользователю для отдачи команды управляемому им устройству перевести взгляд в управляющую позицию, ассоциированную с данной командой, и после появления в ней заданного зрительного стимула подать глазной жест, регистрируют движения глаз пользователя, анализируют записи движений глаз пользователя с целью выявления глазного жеста и определения времени его подачи, и в случае, если выявлен глазной жест, время подачи которого соответствует времени появления стимула в одной из управляющих позиций, детектируют отдачу команды, ассоциированной с комбинацией данного глазного жеста и данной управляющей позиции, и выдают ее на управляемое устройство.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что условия, при которых в управляющих позициях в разное время появляются заданные зрительные стимулы, создают путем предъявления заданных зрительных стимулов в этих позициях в известные моменты времени.
3. Способ по п.2, отличающийся тем, что предъявление заданных зрительных стимулов в управляющих позициях организуют циклами, состоящими из предъявления такого стимула по одному разу в каждой из, по меньшей мере, двух управляющих позиций.
4. Способ по п.1, отличающийся тем, что, если моменты времени появления заданных зрительных стимулов заранее неизвестны, ведут регистрацию сигнала, несущего информацию о появлении таких стимулов, и на основе его анализа определяют моменты времени появления каждого такого стимула.
5. Способ по п.1, отличающийся тем, что подают звуковые сигналы, синхронизированные со зрительными стимулами, при этом используют одну и ту же высоту звука при появлении заданного зрительного стимула в одной и той же позиции и разную высоту - при появлении заданных зрительных стимулов в разных позициях.
6. Способ по п.1, отличающийся тем, что создают условия, при которых зрительные стимулы во всех управляющих позициях одинаковые.
7. Способ по п.1, отличающийся тем, что создают условия, при которых зрительные стимулы, по меньшей мере, в одной из управляющих позиций отличаются от зрительных стимулов в других управляющих позициях.
8. Способ по п.1, отличающийся тем, что пользователю указывают по меньшей мере одну позицию подтверждения, а подтверждающий глазной жест задают в форме саккады в позицию подтверждения.
9. Способ по п.8, отличающийся тем, что после детекции отданной команды ее обозначение показывают в позиции подтверждения.
10. Способ по п.8, отличающийся тем, что пользователю указывают не менее двух позиций подтверждения, а глазной жест задают в форме не менее двух саккад в позиции подтверждения.
11. Способ по п.8, отличающийся тем, что управляющие позиции помещают внутри видимой пользователю особой области, а пользователь получает инструкцию направлять взгляд внутрь этой особой области только тогда, когда он готовится отдать команду.
12. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрацию движений глаз пользователя производят путем видеорегистрации изображения глаз.
13. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрацию движений глаз пользователя производят путем регистрации электроокулограммы.
14. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрацию движений глаз пользователя производят путем регистрации сигналов мозгового происхождения.
15. Способ по п.1, отличающийся тем, что при анализе записей движений глаз пользователя определяют координаты взгляда непосредственно перед и после высокоамплитудных движений глаз.
16. Способ по п.1, отличающийся тем, что регистрируют положение головы пользователя и полученные данные используют при анализе записей движений глаз пользователя с целью выявления глазного жеста.
17. Способ по п.1, отличающийся тем, что наряду с регистрацией движений глаз у пользователя регистрируют сигнал мозгового происхождения, а отдаваемую команду устанавливают при использовании совместного анализа движений глаз и сигнала мозгового происхождения.
18. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют электроэнцефалограмму.
19. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют магнитоэнцефалограмму.
20. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют BOLD-сигнал.
21. Способ по п.17, отличающийся тем, что в качестве сигнала мозгового происхождения используют NIRS-сигнал.
|
||
|
182
|
Патент 2741124
|
Изобретение относится к области биологии. Предложен способ оценки качества образца флавивируса для получения трехмерной структуры с использованием лазеров на свободных электронах, включающий разделение раствора, содержащего частицы флавивируса, на три порции, где первую и вторую порции сканируют с использованием просвечивающего электронного микроскопа, причем вторую порцию предварительно подвергают витрификации, а третью порцию помещают в рентгеновский кварцевый капилляр с последующим определением статистического распределения частиц по размерам методом малоуглового рентгеновского рассеяния. Данный способ обеспечивает отбор образцов флавивирусов, соответствующих необходимым критериям для дальнейшего проведения экспериментов с ними. 1. Способ оценки качества образца флавивируса для получения трехмерной структуры с использованием лазеров на свободных электронах, включающий разделение буферного раствора, содержащего частицы флавивируса, на три порции, нанесение первой порции исследуемого образца флавивируса на поверхность поддерживающей медной сетки и нанесение на нее контрастирующего вещества с последующим сканированием в режиме просвечивающего электронного микроскопа, при этом визуально оценивают чистоту образца и количество зрелых вирусных частиц, нанесение второй порции образца флавивируса в вакууме на поддерживающую медную сетку с углеродным покрытием и витрифицирование в специализированной камере при влажности 95-100% и температуре -180°С в жидком этане с последующим сканированием образца флавивируса в режиме просвечивающего криоэлектронного микроскопа, при этом визуально оценивают наличие зрелых и деформированных частиц, присутствие клеточных белков и фрагментов разрушения вируса, помещение третьей порции образца флавивируса в рентгеновский кварцевый капилляр с последующим определением статистического распределения частиц по размерам методом малоуглового рентгеновского рассеяния, при этом определяют форму и распределение различных олигомеров в растворе по размеру, а качество образца флавивируса определяют по количеству деформированных и зрелых вирусных частиц и отсутствию посторонних примесей в виде клеточного дебриса, примесных белков, фрагментов вирусов и проценту агрегатов.
2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что подготовительное центрифугирование образца флавивируса проводят в режиме 1000g в течение 5 минут.
3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что поддерживающую медную сетку, покрытую пленкой аморфного углерода, обрабатывают в тлеющем разряде для придания сетке гидрофильности.
4. Способ по п. 1, отличающийся тем, что первую порцию образца флавивируса контрастируют с использованием 1% раствора ацетата уранила.
5. Способ по п. 1, отличающийся тем, что получение экспериментальных данных криоэлектронной микроскопии производится с использованием криогенного электронного микроскопа Titan Krios 60-300 при помощи программного обеспечения EPU (FEI).
6. Способ по п. 1, отличающийся тем, что при применении метода малоуглового рентгеновского рассеяния используют синхротронное излучение.
7. Способ по п. 1, отличающийся тем, что при применении метода малоуглового рентгеновского рассеяния для обработки кривых малоуглового рассеяния используют пакет программ ATSAS.
8. Способ по п. 1, отличающийся тем, что распределение вирусных частиц по размерам в приближении полидисперсных сфер получают с помощью программы MIXTURE.
Основное назначение
Изобретение относится к области биологии. Предложен способ оценки качества образца флавивируса для получения трехмерной структуры с использованием лазеров на свободных электронах, включающий разделение раствора, содержащего частицы флавивируса, на три порции, где первую и вторую порции сканируют с использованием просвечивающего электронного микроскопа, причем вторую порцию предварительно подвергают витрификации, а третью порцию помещают в рентгеновский кварцевый капилляр с последующим определением статистического распределения частиц по размерам методом малоуглового рентгеновского рассеяния. Данный способ обеспечивает отбор образцов флавивирусов, соответствующих необходимым критериям для дальнейшего проведения экспериментов с ними. 1. Способ оценки качества образца флавивируса для получения трехмерной структуры с использованием лазеров на свободных электронах, включающий разделение буферного раствора, содержащего частицы флавивируса, на три порции, нанесение первой порции исследуемого образца флавивируса на поверхность поддерживающей медной сетки и нанесение на нее контрастирующего вещества с последующим сканированием в режиме просвечивающего электронного микроскопа, при этом визуально оценивают чистоту образца и количество зрелых вирусных частиц, нанесение второй порции образца флавивируса в вакууме на поддерживающую медную сетку с углеродным покрытием и витрифицирование в специализированной камере при влажности 95-100% и температуре -180°С в жидком этане с последующим сканированием образца флавивируса в режиме просвечивающего криоэлектронного микроскопа, при этом визуально оценивают наличие зрелых и деформированных частиц, присутствие клеточных белков и фрагментов разрушения вируса, помещение третьей порции образца флавивируса в рентгеновский кварцевый капилляр с последующим определением статистического распределения частиц по размерам методом малоуглового рентгеновского рассеяния, при этом определяют форму и распределение различных олигомеров в растворе по размеру, а качество образца флавивируса определяют по количеству деформированных и зрелых вирусных частиц и отсутствию посторонних примесей в виде клеточного дебриса, примесных белков, фрагментов вирусов и проценту агрегатов.
2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что подготовительное центрифугирование образца флавивируса проводят в режиме 1000g в течение 5 минут.
3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что поддерживающую медную сетку, покрытую пленкой аморфного углерода, обрабатывают в тлеющем разряде для придания сетке гидрофильности.
4. Способ по п. 1, отличающийся тем, что первую порцию образца флавивируса контрастируют с использованием 1% раствора ацетата уранила.
5. Способ по п. 1, отличающийся тем, что получение экспериментальных данных криоэлектронной микроскопии производится с использованием криогенного электронного микроскопа Titan Krios 60-300 при помощи программного обеспечения EPU (FEI).
6. Способ по п. 1, отличающийся тем, что при применении метода малоуглового рентгеновского рассеяния используют синхротронное излучение.
7. Способ по п. 1, отличающийся тем, что при применении метода малоуглового рентгеновского рассеяния для обработки кривых малоуглового рассеяния используют пакет программ ATSAS.
8. Способ по п. 1, отличающийся тем, что распределение вирусных частиц по размерам в приближении полидисперсных сфер получают с помощью программы MIXTURE.
|
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (RU)
Основное назначение
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (RU)
|
1. Способ оценки качества образца флавивируса для получения трехмерной структуры с использованием лазеров на свободных электронах, включающий разделение буферного раствора, содержащего частицы флавивируса, на три порции, нанесение первой порции исследуемого образца флавивируса на поверхность поддерживающей медной сетки и нанесение на нее контрастирующего вещества с последующим сканированием в режиме просвечивающего электронного микроскопа, при этом визуально оценивают чистоту образца и количество зрелых вирусных частиц, нанесение второй порции образца флавивируса в вакууме на поддерживающую медную сетку с углеродным покрытием и витрифицирование в специализированной камере при влажности 95-100% и температуре -180°С в жидком этане с последующим сканированием образца флавивируса в режиме просвечивающего криоэлектронного микроскопа, при этом визуально оценивают наличие зрелых и деформированных частиц, присутствие клеточных белков и фрагментов разрушения вируса, помещение третьей порции образца флавивируса в рентгеновский кварцевый капилляр с последующим определением статистического распределения частиц по размерам методом малоуглового рентгеновского рассеяния, при этом определяют форму и распределение различных олигомеров в растворе по размеру, а качество образца флавивируса определяют по количеству деформированных и зрелых вирусных частиц и отсутствию посторонних примесей в виде клеточного дебриса, примесных белков, фрагментов вирусов и проценту агрегатов.
2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что подготовительное центрифугирование образца флавивируса проводят в режиме 1000g в течение 5 минут.
3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что поддерживающую медную сетку, покрытую пленкой аморфного углерода, обрабатывают в тлеющем разряде для придания сетке гидрофильности.
4. Способ по п. 1, отличающийся тем, что первую порцию образца флавивируса контрастируют с использованием 1% раствора ацетата уранила.
5. Способ по п. 1, отличающийся тем, что получение экспериментальных данных криоэлектронной микроскопии производится с использованием криогенного электронного микроскопа Titan Krios 60-300 при помощи программного обеспечения EPU (FEI).
6. Способ по п. 1, отличающийся тем, что при применении метода малоуглового рентгеновского рассеяния используют синхротронное излучение.
7. Способ по п. 1, отличающийся тем, что при применении метода малоуглового рентгеновского рассеяния для обработки кривых малоуглового рассеяния используют пакет программ ATSAS.
8. Способ по п. 1, отличающийся тем, что распределение вирусных частиц по размерам в приближении полидисперсных сфер получают с помощью программы MIXTURE.
Основное назначение
1. Способ оценки качества образца флавивируса для получения трехмерной структуры с использованием лазеров на свободных электронах, включающий разделение буферного раствора, содержащего частицы флавивируса, на три порции, нанесение первой порции исследуемого образца флавивируса на поверхность поддерживающей медной сетки и нанесение на нее контрастирующего вещества с последующим сканированием в режиме просвечивающего электронного микроскопа, при этом визуально оценивают чистоту образца и количество зрелых вирусных частиц, нанесение второй порции образца флавивируса в вакууме на поддерживающую медную сетку с углеродным покрытием и витрифицирование в специализированной камере при влажности 95-100% и температуре -180°С в жидком этане с последующим сканированием образца флавивируса в режиме просвечивающего криоэлектронного микроскопа, при этом визуально оценивают наличие зрелых и деформированных частиц, присутствие клеточных белков и фрагментов разрушения вируса, помещение третьей порции образца флавивируса в рентгеновский кварцевый капилляр с последующим определением статистического распределения частиц по размерам методом малоуглового рентгеновского рассеяния, при этом определяют форму и распределение различных олигомеров в растворе по размеру, а качество образца флавивируса определяют по количеству деформированных и зрелых вирусных частиц и отсутствию посторонних примесей в виде клеточного дебриса, примесных белков, фрагментов вирусов и проценту агрегатов.
2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что подготовительное центрифугирование образца флавивируса проводят в режиме 1000g в течение 5 минут.
3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что поддерживающую медную сетку, покрытую пленкой аморфного углерода, обрабатывают в тлеющем разряде для придания сетке гидрофильности.
4. Способ по п. 1, отличающийся тем, что первую порцию образца флавивируса контрастируют с использованием 1% раствора ацетата уранила.
5. Способ по п. 1, отличающийся тем, что получение экспериментальных данных криоэлектронной микроскопии производится с использованием криогенного электронного микроскопа Titan Krios 60-300 при помощи программного обеспечения EPU (FEI).
6. Способ по п. 1, отличающийся тем, что при применении метода малоуглового рентгеновского рассеяния используют синхротронное излучение.
7. Способ по п. 1, отличающийся тем, что при применении метода малоуглового рентгеновского рассеяния для обработки кривых малоуглового рассеяния используют пакет программ ATSAS.
8. Способ по п. 1, отличающийся тем, что распределение вирусных частиц по размерам в приближении полидисперсных сфер получают с помощью программы MIXTURE.
|
||
|
183
|
Патент 2822830
|
Изобретение относится к области биотехнологии и медицины, а именно к созданию высокопористых полимерных частиц, используемых в регенеративной медицине, тканевой инженерии и хирургии, а также в качестве назальных или трансдермальных форм доставки лекарств, или в качестве кровоостанавливающих средств. Для получения пористых полимерных микрочастиц используют лиофильную сушку. Способ включает несколько стадий: на первой готовят полимерный раствор, используя в качестве растворителей воду и разбавленные растворы кислот и щелочей, или буферные водные растворы или 1,4-диоксан, диметилсульфоксид. При этом к навеске полимерного материала с содержанием от 0,5 до 2 масс. % сухого вещества от конечного количества раствора приливают от 98 до 99,5 масс. % растворителя, перемешивают на магнитной мешалке не менее 48 ч при комнатной температуре и скорости от 100 до 300 об/мин. Затем проводят стадию формирования аэрозоля с последующей шоковой заморозкой, включающей залив полимерного раствора или суспензии в резервуар пневматического распылителя с последующим распылением при давлении 3 бар в металлическую емкостью, наполненную жидким азотом на 2/3 объема. После этого основную часть жидкого азота испаряют при комнатной температуре, частицы переносят в предварительно охлажденный до -195°С полипропиленовый стакан и оставляют в морозильной камере при температуре -24°С в течение 24 ч до полного испарения азота. Последней стадией является высушивание замороженной суспензии, включающее удаление растворителя из пор посредством сублимационной сушки с дальнейшей досушкой в сушильном шкафу при комнатной температуре. Предложенное изобретение позволяет получать пористые полимерные микрочастицы с применением лиофильной сушки. 2 з.п. ф-лы, 2 ил., 9 пр.
Основное назначение
Изобретение относится к области биотехнологии и медицины, а именно к созданию высокопористых полимерных частиц, используемых в регенеративной медицине, тканевой инженерии и хирургии, а также в качестве назальных или трансдермальных форм доставки лекарств, или в качестве кровоостанавливающих средств. Для получения пористых полимерных микрочастиц используют лиофильную сушку. Способ включает несколько стадий: на первой готовят полимерный раствор, используя в качестве растворителей воду и разбавленные растворы кислот и щелочей, или буферные водные растворы или 1,4-диоксан, диметилсульфоксид. При этом к навеске полимерного материала с содержанием от 0,5 до 2 масс. % сухого вещества от конечного количества раствора приливают от 98 до 99,5 масс. % растворителя, перемешивают на магнитной мешалке не менее 48 ч при комнатной температуре и скорости от 100 до 300 об/мин. Затем проводят стадию формирования аэрозоля с последующей шоковой заморозкой, включающей залив полимерного раствора или суспензии в резервуар пневматического распылителя с последующим распылением при давлении 3 бар в металлическую емкостью, наполненную жидким азотом на 2/3 объема. После этого основную часть жидкого азота испаряют при комнатной температуре, частицы переносят в предварительно охлажденный до -195°С полипропиленовый стакан и оставляют в морозильной камере при температуре -24°С в течение 24 ч до полного испарения азота. Последней стадией является высушивание замороженной суспензии, включающее удаление растворителя из пор посредством сублимационной сушки с дальнейшей досушкой в сушильном шкафу при комнатной температуре. Предложенное изобретение позволяет получать пористые полимерные микрочастицы с применением лиофильной сушки. 2 з.п. ф-лы, 2 ил., 9 пр.
|
Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт» (RU)
Основное назначение
Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт» (RU)
|
Изобретение относится к области биотехнологии и медицины, а именно к созданию высокопористых полимерных частиц, используемых в регенеративной медицине, тканевой инженерии и хирургии, а также в качестве назальных или трансдермальных форм доставки лекарств, или в качестве кровоостанавливающих средств. Для получения пористых полимерных микрочастиц используют лиофильную сушку. Способ включает несколько стадий: на первой готовят полимерный раствор, используя в качестве растворителей воду и разбавленные растворы кислот и щелочей, или буферные водные растворы или 1,4-диоксан, диметилсульфоксид. При этом к навеске полимерного материала с содержанием от 0,5 до 2 масс. % сухого вещества от конечного количества раствора приливают от 98 до 99,5 масс. % растворителя, перемешивают на магнитной мешалке не менее 48 ч при комнатной температуре и скорости от 100 до 300 об/мин. Затем проводят стадию формирования аэрозоля с последующей шоковой заморозкой, включающей залив полимерного раствора или суспензии в резервуар пневматического распылителя с последующим распылением при давлении 3 бар в металлическую емкостью, наполненную жидким азотом на 2/3 объема. После этого основную часть жидкого азота испаряют при комнатной температуре, частицы переносят в предварительно охлажденный до -195°С полипропиленовый стакан и оставляют в морозильной камере при температуре -24°С в течение 24 ч до полного испарения азота. Последней стадией является высушивание замороженной суспензии, включающее удаление растворителя из пор посредством сублимационной сушки с дальнейшей досушкой в сушильном шкафу при комнатной температуре. Предложенное изобретение позволяет получать пористые полимерные микрочастицы с применением лиофильной сушки. 2 з.п. ф-лы, 2 ил., 9 пр.
Основное назначение
Изобретение относится к области биотехнологии и медицины, а именно к созданию высокопористых полимерных частиц, используемых в регенеративной медицине, тканевой инженерии и хирургии, а также в качестве назальных или трансдермальных форм доставки лекарств, или в качестве кровоостанавливающих средств. Для получения пористых полимерных микрочастиц используют лиофильную сушку. Способ включает несколько стадий: на первой готовят полимерный раствор, используя в качестве растворителей воду и разбавленные растворы кислот и щелочей, или буферные водные растворы или 1,4-диоксан, диметилсульфоксид. При этом к навеске полимерного материала с содержанием от 0,5 до 2 масс. % сухого вещества от конечного количества раствора приливают от 98 до 99,5 масс. % растворителя, перемешивают на магнитной мешалке не менее 48 ч при комнатной температуре и скорости от 100 до 300 об/мин. Затем проводят стадию формирования аэрозоля с последующей шоковой заморозкой, включающей залив полимерного раствора или суспензии в резервуар пневматического распылителя с последующим распылением при давлении 3 бар в металлическую емкостью, наполненную жидким азотом на 2/3 объема. После этого основную часть жидкого азота испаряют при комнатной температуре, частицы переносят в предварительно охлажденный до -195°С полипропиленовый стакан и оставляют в морозильной камере при температуре -24°С в течение 24 ч до полного испарения азота. Последней стадией является высушивание замороженной суспензии, включающее удаление растворителя из пор посредством сублимационной сушки с дальнейшей досушкой в сушильном шкафу при комнатной температуре. Предложенное изобретение позволяет получать пористые полимерные микрочастицы с применением лиофильной сушки. 2 з.п. ф-лы, 2 ил., 9 пр.
|
||
|
184
|
Патент 2504781
|
Изобретение относится к области биотехнологии и медицины. Предложен способ диагностики предрасположенности пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта. Фибробласты кожи, взятые у пациента, культивируют и обрабатывают вирусными конструкциями, несущими гены Oct4, Sox2 и Klf4 под контролем CMV промотера. Осуществляют направленную дифференцировку фибробластов в клетки ретины. Из клеток ретины выделяют кодирующую РНК гена АВСА4. По наличию делеции в экзоне 39-41 гена АВСА4 диагностируют предрасположенность пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта. Изобретение позволяет эффективно диагностировать предрасположенность пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта по наличию делеции в экзоне 39-41 гена АВСА4. Способ диагностики предрасположенности пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта, включающий взятие фибробластов кожи у этого пациента, их культивирование и обработку вирусными конструкциями, несущими гены Oct4, Sox2 и Klf4 под контролем CMV промотера, последующее культивирование для направленной дифференцировки фибробластов в клетки ретины и дальнейшее исследование клеток ретины на наличие мутации в экзоне 39-41 гена АВСА4, и по наличию делеции в этом экзоне диагностируют предрасположенность пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта.
Основное назначение
Изобретение относится к области биотехнологии и медицины. Предложен способ диагностики предрасположенности пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта. Фибробласты кожи, взятые у пациента, культивируют и обрабатывают вирусными конструкциями, несущими гены Oct4, Sox2 и Klf4 под контролем CMV промотера. Осуществляют направленную дифференцировку фибробластов в клетки ретины. Из клеток ретины выделяют кодирующую РНК гена АВСА4. По наличию делеции в экзоне 39-41 гена АВСА4 диагностируют предрасположенность пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта. Изобретение позволяет эффективно диагностировать предрасположенность пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта по наличию делеции в экзоне 39-41 гена АВСА4. Способ диагностики предрасположенности пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта, включающий взятие фибробластов кожи у этого пациента, их культивирование и обработку вирусными конструкциями, несущими гены Oct4, Sox2 и Klf4 под контролем CMV промотера, последующее культивирование для направленной дифференцировки фибробластов в клетки ретины и дальнейшее исследование клеток ретины на наличие мутации в экзоне 39-41 гена АВСА4, и по наличию делеции в этом экзоне диагностируют предрасположенность пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта.
|
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (RU)
Основное назначение
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (RU)
|
Способ диагностики предрасположенности пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта, включающий взятие фибробластов кожи у этого пациента, их культивирование и обработку вирусными конструкциями, несущими гены Oct4, Sox2 и Klf4 под контролем CMV промотера, последующее культивирование для направленной дифференцировки фибробластов в клетки ретины и дальнейшее исследование клеток ретины на наличие мутации в экзоне 39-41 гена АВСА4, и по наличию делеции в этом экзоне диагностируют предрасположенность пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта.
Основное назначение
Способ диагностики предрасположенности пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта, включающий взятие фибробластов кожи у этого пациента, их культивирование и обработку вирусными конструкциями, несущими гены Oct4, Sox2 и Klf4 под контролем CMV промотера, последующее культивирование для направленной дифференцировки фибробластов в клетки ретины и дальнейшее исследование клеток ретины на наличие мутации в экзоне 39-41 гена АВСА4, и по наличию делеции в этом экзоне диагностируют предрасположенность пациента к наследственной макулодистрофии Штаргардта.
|
||
|
185
|
Патент 2814986
|
Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к слитому пептиду, содержащему в своем составе расположенные от N-конца к C-концу самоассоциирующий пептид L6KD, пептид pepA1 и антиген. Изобретение эффективно для получения биосинтетических антиген-презентирующих наночастиц. 6 ил., 2 табл., 24 пр.
Основное назначение
Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к слитому пептиду, содержащему в своем составе расположенные от N-конца к C-концу самоассоциирующий пептид L6KD, пептид pepA1 и антиген. Изобретение эффективно для получения биосинтетических антиген-презентирующих наночастиц. 6 ил., 2 табл., 24 пр.
|
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (RU)
Основное назначение
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (RU)
|
Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к слитому пептиду, содержащему в своем составе расположенные от N-конца к C-концу самоассоциирующий пептид L6KD, пептид pepA1 и антиген. Изобретение эффективно для получения биосинтетических антиген-презентирующих наночастиц. 6 ил., 2 табл., 24 пр.
Основное назначение
Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к слитому пептиду, содержащему в своем составе расположенные от N-конца к C-концу самоассоциирующий пептид L6KD, пептид pepA1 и антиген. Изобретение эффективно для получения биосинтетических антиген-презентирующих наночастиц. 6 ил., 2 табл., 24 пр.
|
||
|
186
|
Патент 2842942
|
Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к способу определения устойчивости к обезвоживанию винных штаммов дрожжей Saccharomyces cerevisiae и активности протекторных соединений, способствующих сохранению жизнеспособности дрожжевых клеток после обезвоживания, и может быть использовано в пищевой и алкогольной промышленности. Способ включает подготовку тест-организмов, наращивание биомассы на синтетической питательной среде, выдержку на протекторных соединениях, обезвоживание, реактивацию сухих дрожжей, проведение посевов на плотную среду, культивирование и вычисление результатов. Для получения биомассы используют трехсуточную культуру тест-организмов, которую вносят на синтетическую питательную среду и культивируют в течение 48 часов при температуре 23-27°С при перемешивании 200 об/мин. Состав синтетической питательной среды: сахароза 20 г/дм3, сернокислый аммоний 3 г/дм3, сернокислый магний 0,7 г/дм3, азотнокислый кальций 0,4 г/дм3, хлористый натрий 0,5 г/дм3, фосфорнокислый калий однозамещенный 1,0 г/дм3, инозит 5,0 мг/дм3, биотин 0,0001 мг/дм3, пантотеновая кислота 0,25 мг/дм3, тиамин 1,0 мг/дм3, пиридоксин 0,25 мг/дм3, никотиновая кислота 0,5 мг/дм3. Полученную биомассу клеток тест-организмов промывают в стерильной воде, делят на три равные части, при этом первую часть сразу инокулируют на плотную среду, вторую часть направляют на сушку, а в третью часть добавляют протекторные соединения, а затем направляют на сушку. Вторая и третья части обезвоженной биомассы выдерживаются не менее чем 24 часа, а затем реактивируются с последующим инокулированием на плотные питательные среды. Культивирование на плотных питательных средах проводят в течение 3-х суток при температуре 23-27°С, после чего проводят подсчет колониеобразующих единиц и вычисление жизнеспособности дрожжей по формуле. Изобретение обеспечивает возможность оценки устойчивости к обезвоживанию штаммов дрожжей Saccharomyces cerevisiae и активности протекторных соединений в заданных условиях культивирования. Способ определения устойчивости к обезвоживанию винных штаммов дрожжей Saccharomyces cerevisiae и активности протекторных соединений, включающий подготовку тест-организмов, наращивание биомассы, выдержку на протекторных соединениях, обезвоживание, реактивацию сухих дрожжей, посев на плотную питательную среду, культивирование, вычисление результатов, отличающийся тем, что для подготовки тест-организмов используют биомассу трехсуточной культуры дрожжей Saccharomyces cerevisiae, далее наращивание биомассы проводят при культивировании дрожжей в течение 48 часов, а в качестве питательной среды для получения биомассы используют синтетическую питательную среду, содержащую: сахарозу 20 г/дм3, сернокислый аммоний 3 г/дм3, сернокислый магний 0,7 г/дм3, азотнокислый кальций 0,4 г/дм3, хлористый натрий 0,5 г/дм3, фосфорнокислый калий однозамещенный 1,0 г/дм3, инозит 5,0 мг/дм3, биотин 0,0001 мг/дм3, пантотеновую кислоту 0,25 мг/дм3, тиамин 1,0 мг/дм3, пиридоксин 0,25 мг/дм3, никотиновую кислоту 0,5 мг/дм3, после чего полученную биомассу делят на три равные части, при этом первую часть сразу инокулируют на плотную питательную среду YPD, вторую часть направляют на сушку, а в третью часть добавляют протекторные соединения и также направляют на сушку, после чего высушенные вторую и третью части биомассы выдерживают не менее чем 24 часа, а затем реактивируют и инокулируют на плотную питательную среду YPD, проводят раздельное культивирование всех трех частей, после чего ведут подсчет колониеобразующих единиц и вычисление жизнеспособности дрожжей по каждой части отдельно с возможностью одновременной оценки устойчивости к обезвоживанию дрожжей и активности протекторных соединений.
Основное назначение
Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к способу определения устойчивости к обезвоживанию винных штаммов дрожжей Saccharomyces cerevisiae и активности протекторных соединений, способствующих сохранению жизнеспособности дрожжевых клеток после обезвоживания, и может быть использовано в пищевой и алкогольной промышленности. Способ включает подготовку тест-организмов, наращивание биомассы на синтетической питательной среде, выдержку на протекторных соединениях, обезвоживание, реактивацию сухих дрожжей, проведение посевов на плотную среду, культивирование и вычисление результатов. Для получения биомассы используют трехсуточную культуру тест-организмов, которую вносят на синтетическую питательную среду и культивируют в течение 48 часов при температуре 23-27°С при перемешивании 200 об/мин. Состав синтетической питательной среды: сахароза 20 г/дм3, сернокислый аммоний 3 г/дм3, сернокислый магний 0,7 г/дм3, азотнокислый кальций 0,4 г/дм3, хлористый натрий 0,5 г/дм3, фосфорнокислый калий однозамещенный 1,0 г/дм3, инозит 5,0 мг/дм3, биотин 0,0001 мг/дм3, пантотеновая кислота 0,25 мг/дм3, тиамин 1,0 мг/дм3, пиридоксин 0,25 мг/дм3, никотиновая кислота 0,5 мг/дм3. Полученную биомассу клеток тест-организмов промывают в стерильной воде, делят на три равные части, при этом первую часть сразу инокулируют на плотную среду, вторую часть направляют на сушку, а в третью часть добавляют протекторные соединения, а затем направляют на сушку. Вторая и третья части обезвоженной биомассы выдерживаются не менее чем 24 часа, а затем реактивируются с последующим инокулированием на плотные питательные среды. Культивирование на плотных питательных средах проводят в течение 3-х суток при температуре 23-27°С, после чего проводят подсчет колониеобразующих единиц и вычисление жизнеспособности дрожжей по формуле. Изобретение обеспечивает возможность оценки устойчивости к обезвоживанию штаммов дрожжей Saccharomyces cerevisiae и активности протекторных соединений в заданных условиях культивирования. Способ определения устойчивости к обезвоживанию винных штаммов дрожжей Saccharomyces cerevisiae и активности протекторных соединений, включающий подготовку тест-организмов, наращивание биомассы, выдержку на протекторных соединениях, обезвоживание, реактивацию сухих дрожжей, посев на плотную питательную среду, культивирование, вычисление результатов, отличающийся тем, что для подготовки тест-организмов используют биомассу трехсуточной культуры дрожжей Saccharomyces cerevisiae, далее наращивание биомассы проводят при культивировании дрожжей в течение 48 часов, а в качестве питательной среды для получения биомассы используют синтетическую питательную среду, содержащую: сахарозу 20 г/дм3, сернокислый аммоний 3 г/дм3, сернокислый магний 0,7 г/дм3, азотнокислый кальций 0,4 г/дм3, хлористый натрий 0,5 г/дм3, фосфорнокислый калий однозамещенный 1,0 г/дм3, инозит 5,0 мг/дм3, биотин 0,0001 мг/дм3, пантотеновую кислоту 0,25 мг/дм3, тиамин 1,0 мг/дм3, пиридоксин 0,25 мг/дм3, никотиновую кислоту 0,5 мг/дм3, после чего полученную биомассу делят на три равные части, при этом первую часть сразу инокулируют на плотную питательную среду YPD, вторую часть направляют на сушку, а в третью часть добавляют протекторные соединения и также направляют на сушку, после чего высушенные вторую и третью части биомассы выдерживают не менее чем 24 часа, а затем реактивируют и инокулируют на плотную питательную среду YPD, проводят раздельное культивирование всех трех частей, после чего ведут подсчет колониеобразующих единиц и вычисление жизнеспособности дрожжей по каждой части отдельно с возможностью одновременной оценки устойчивости к обезвоживанию дрожжей и активности протекторных соединений.
|
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (RU)
Основное назначение
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (RU)
|
Способ определения устойчивости к обезвоживанию винных штаммов дрожжей Saccharomyces cerevisiae и активности протекторных соединений, включающий подготовку тест-организмов, наращивание биомассы, выдержку на протекторных соединениях, обезвоживание, реактивацию сухих дрожжей, посев на плотную питательную среду, культивирование, вычисление результатов, отличающийся тем, что для подготовки тест-организмов используют биомассу трехсуточной культуры дрожжей Saccharomyces cerevisiae, далее наращивание биомассы проводят при культивировании дрожжей в течение 48 часов, а в качестве питательной среды для получения биомассы используют синтетическую питательную среду, содержащую: сахарозу 20 г/дм3, сернокислый аммоний 3 г/дм3, сернокислый магний 0,7 г/дм3, азотнокислый кальций 0,4 г/дм3, хлористый натрий 0,5 г/дм3, фосфорнокислый калий однозамещенный 1,0 г/дм3, инозит 5,0 мг/дм3, биотин 0,0001 мг/дм3, пантотеновую кислоту 0,25 мг/дм3, тиамин 1,0 мг/дм3, пиридоксин 0,25 мг/дм3, никотиновую кислоту 0,5 мг/дм3, после чего полученную биомассу делят на три равные части, при этом первую часть сразу инокулируют на плотную питательную среду YPD, вторую часть направляют на сушку, а в третью часть добавляют протекторные соединения и также направляют на сушку, после чего высушенные вторую и третью части биомассы выдерживают не менее чем 24 часа, а затем реактивируют и инокулируют на плотную питательную среду YPD, проводят раздельное культивирование всех трех частей, после чего ведут подсчет колониеобразующих единиц и вычисление жизнеспособности дрожжей по каждой части отдельно с возможностью одновременной оценки устойчивости к обезвоживанию дрожжей и активности протекторных соединений.
Основное назначение
Способ определения устойчивости к обезвоживанию винных штаммов дрожжей Saccharomyces cerevisiae и активности протекторных соединений, включающий подготовку тест-организмов, наращивание биомассы, выдержку на протекторных соединениях, обезвоживание, реактивацию сухих дрожжей, посев на плотную питательную среду, культивирование, вычисление результатов, отличающийся тем, что для подготовки тест-организмов используют биомассу трехсуточной культуры дрожжей Saccharomyces cerevisiae, далее наращивание биомассы проводят при культивировании дрожжей в течение 48 часов, а в качестве питательной среды для получения биомассы используют синтетическую питательную среду, содержащую: сахарозу 20 г/дм3, сернокислый аммоний 3 г/дм3, сернокислый магний 0,7 г/дм3, азотнокислый кальций 0,4 г/дм3, хлористый натрий 0,5 г/дм3, фосфорнокислый калий однозамещенный 1,0 г/дм3, инозит 5,0 мг/дм3, биотин 0,0001 мг/дм3, пантотеновую кислоту 0,25 мг/дм3, тиамин 1,0 мг/дм3, пиридоксин 0,25 мг/дм3, никотиновую кислоту 0,5 мг/дм3, после чего полученную биомассу делят на три равные части, при этом первую часть сразу инокулируют на плотную питательную среду YPD, вторую часть направляют на сушку, а в третью часть добавляют протекторные соединения и также направляют на сушку, после чего высушенные вторую и третью части биомассы выдерживают не менее чем 24 часа, а затем реактивируют и инокулируют на плотную питательную среду YPD, проводят раздельное культивирование всех трех частей, после чего ведут подсчет колониеобразующих единиц и вычисление жизнеспособности дрожжей по каждой части отдельно с возможностью одновременной оценки устойчивости к обезвоживанию дрожжей и активности протекторных соединений.
|
||
|
187
|
Патент 2732225
|
Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к технологии выращивания фототрофных микроорганизмов. Способ культивирования фототрофных микроорганизмов включает приготовление посевного материала, питательной среды для выбранного вида фототрофного микроорганизма. Последующую подачу атмосферного воздуха в рабочую камеру фотобиореактора. Затем осуществление перемешивания культуральной жидкости перекачиванием помпой и барботированием. При этом заранее подготовленную клеточную суспензию фототрофных микроорганизмов и отражающую пластину из гидрогеля с высоким альбедо помещают в фотобиореактор. Осуществляют поддержание освещенности на уровне 100±5 мкмоль/м2*с в разное время суток автоматически путем изменения электронапряжения на источниках искусственного освещения от 3,6 до 5 В в зависимости от изменения напряжения на фоторезисторах по формуле:
https://new.fips.ru/ofpstorage/Doc/IZPM/RUNWC1/000/000/002/732/225/ИЗ-02732225-00001/00000008.jpg
Увеличенное изображение (открывается в отдельном окне)
где V - напряжение, подаваемое на источники искусственного освещения, В; Е - напряжение на фоторезисторах, В. Изобретение обеспечивает достижение технического результата, заключающегося в повышении энергетической эффективности и снижении энергетических затрат на процесс культивирования за счет обеспечения возможности использования режимов адаптивного освещения и повышения уровня освещенности в культуральной жидкости в фотобиореакторе при использовании отражающей пластины из гидрогедя с высоким альбедо. Способ культивирования фотосинтезирующих микроорганизмов в фотобиореакторе, включающий приготовление посевного материала, питательной среды для выбранного вида фототрофного микроорганизма, подачу атмосферного воздуха в рабочую камеру фотобиореактора, осуществление перемешивания культуральной жидкости перекачиванием помпой и барботированием, отличающийся тем, что заранее подготовленную клеточную суспензию фототрофных микроорганизмов и отражающую пластину из гидрогеля с высоким альбедо помещают в фотобиореактор, поддержание освещенности на уровне 100±5 мкмоль/м2*с в разное время суток осуществляют автоматически путем изменения электронапряжения на источниках искусственного освещения от 3,6 до 5 В в зависимости от изменения напряжения на фоторезисторах по формуле:
https://new.fips.ru/ofpstorage/Doc/IZPM/RUNWC1/000/000/002/732/225/ИЗ-02732225-00001/00000007.jpg
Увеличенное изображение (открывается в отдельном окне)
где V - напряжение, подаваемое на источники искусственного освещения, В; Е - напряжение на фоторезисторах, В.
Основное назначение
Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к технологии выращивания фототрофных микроорганизмов. Способ культивирования фототрофных микроорганизмов включает приготовление посевного материала, питательной среды для выбранного вида фототрофного микроорганизма. Последующую подачу атмосферного воздуха в рабочую камеру фотобиореактора. Затем осуществление перемешивания культуральной жидкости перекачиванием помпой и барботированием. При этом заранее подготовленную клеточную суспензию фототрофных микроорганизмов и отражающую пластину из гидрогеля с высоким альбедо помещают в фотобиореактор. Осуществляют поддержание освещенности на уровне 100±5 мкмоль/м2*с в разное время суток автоматически путем изменения электронапряжения на источниках искусственного освещения от 3,6 до 5 В в зависимости от изменения напряжения на фоторезисторах по формуле:
https://new.fips.ru/ofpstorage/Doc/IZPM/RUNWC1/000/000/002/732/225/ИЗ-02732225-00001/00000008.jpg
Увеличенное изображение (открывается в отдельном окне)
где V - напряжение, подаваемое на источники искусственного освещения, В; Е - напряжение на фоторезисторах, В. Изобретение обеспечивает достижение технического результата, заключающегося в повышении энергетической эффективности и снижении энергетических затрат на процесс культивирования за счет обеспечения возможности использования режимов адаптивного освещения и повышения уровня освещенности в культуральной жидкости в фотобиореакторе при использовании отражающей пластины из гидрогедя с высоким альбедо. Способ культивирования фотосинтезирующих микроорганизмов в фотобиореакторе, включающий приготовление посевного материала, питательной среды для выбранного вида фототрофного микроорганизма, подачу атмосферного воздуха в рабочую камеру фотобиореактора, осуществление перемешивания культуральной жидкости перекачиванием помпой и барботированием, отличающийся тем, что заранее подготовленную клеточную суспензию фототрофных микроорганизмов и отражающую пластину из гидрогеля с высоким альбедо помещают в фотобиореактор, поддержание освещенности на уровне 100±5 мкмоль/м2*с в разное время суток осуществляют автоматически путем изменения электронапряжения на источниках искусственного освещения от 3,6 до 5 В в зависимости от изменения напряжения на фоторезисторах по формуле:
https://new.fips.ru/ofpstorage/Doc/IZPM/RUNWC1/000/000/002/732/225/ИЗ-02732225-00001/00000007.jpg
Увеличенное изображение (открывается в отдельном окне)
где V - напряжение, подаваемое на источники искусственного освещения, В; Е - напряжение на фоторезисторах, В.
|
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (RU)
Основное назначение
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (RU)
|
Способ культивирования фотосинтезирующих микроорганизмов в фотобиореакторе, включающий приготовление посевного материала, питательной среды для выбранного вида фототрофного микроорганизма, подачу атмосферного воздуха в рабочую камеру фотобиореактора, осуществление перемешивания культуральной жидкости перекачиванием помпой и барботированием, отличающийся тем, что заранее подготовленную клеточную суспензию фототрофных микроорганизмов и отражающую пластину из гидрогеля с высоким альбедо помещают в фотобиореактор, поддержание освещенности на уровне 100±5 мкмоль/м2*с в разное время суток осуществляют автоматически путем изменения электронапряжения на источниках искусственного освещения от 3,6 до 5 В в зависимости от изменения напряжения на фоторезисторах по формуле:
https://new.fips.ru/ofpstorage/Doc/IZPM/RUNWC1/000/000/002/732/225/ИЗ-02732225-00001/00000007.jpg
Увеличенное изображение (открывается в отдельном окне)
где V - напряжение, подаваемое на источники искусственного освещения, В; Е - напряжение на фоторезисторах, В.
Основное назначение
Способ культивирования фотосинтезирующих микроорганизмов в фотобиореакторе, включающий приготовление посевного материала, питательной среды для выбранного вида фототрофного микроорганизма, подачу атмосферного воздуха в рабочую камеру фотобиореактора, осуществление перемешивания культуральной жидкости перекачиванием помпой и барботированием, отличающийся тем, что заранее подготовленную клеточную суспензию фототрофных микроорганизмов и отражающую пластину из гидрогеля с высоким альбедо помещают в фотобиореактор, поддержание освещенности на уровне 100±5 мкмоль/м2*с в разное время суток осуществляют автоматически путем изменения электронапряжения на источниках искусственного освещения от 3,6 до 5 В в зависимости от изменения напряжения на фоторезисторах по формуле:
https://new.fips.ru/ofpstorage/Doc/IZPM/RUNWC1/000/000/002/732/225/ИЗ-02732225-00001/00000007.jpg
Увеличенное изображение (открывается в отдельном окне)
где V - напряжение, подаваемое на источники искусственного освещения, В; Е - напряжение на фоторезисторах, В.
|
||
|
188
|
Патент 2515914
|
Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к рекомбинантной продукции белков человека, и может быть использовано для получения гибридного рекомбинантного эритропоэтина человека. Конструируют нуклеотидные последовательности, кодирующие гибридные белки EPO-TR 1,6, EPO-TR 4 и EPO-TR 6. Белок ЕРО-TR 1,6 представляет собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 1,6 белка MUC1 человека. Белок EPO-TR 4 представляет собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 4 белка MUC1 человека. Гибридный белок EPO-TR 6 представляет собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 6 белка MUC1 человека. Гибридные белки получают путем роллерного культивирования в подходящих условиях модифицированной линии клеток млекопитающих СНО, содержащей кодирующую белок нуклеотидную последовательность с последующим выделением гибридного белка из культуральной жидкости. Изобретение позволяет получить гибридный рекомбинантный эритропоэтин человека, обладающий пролонгированным действием. 1. Гибридный белок ЕРО-TR 1,6 на основе рекомбинантного эритропоэтина человека, обладающий пролонгированным действием, соответствующий аминокислотной последовательности SEQ ID NO4 и представляющий собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 1,6 белка MUC1 человека.
2. Гибридный белок EPO-TR 4 на основе рекомбинантного эритропоэтина человека, обладающий пролонгированным действием, соответствующий аминокислотной последовательности SEQ ID NO5 и представляющий собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 4 белка MUC1 человека.
3. Гибридный белок EPO-TR 6 на основе рекомбинантного эритропоэтина человека, обладающий пролонгированным действием, соответствующий аминокислотной последовательности SEQ ID NO6 и представляющий собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 6 белка MUC1 человека.
4. Способ получения гибридного белка по п.п.1 или 2 или 3 путем роллерного культивирования в подходящих условиях модифицированной линии клеток млекопитающих СНО, содержащей кодирующую этот белок нуклеотидную последовательность SEQ ID NO1 или SEQ ID NO2 или SEQ ID NO3 с последующим выделением гибридного белка из культуральной жидкости.
Основное назначение
Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к рекомбинантной продукции белков человека, и может быть использовано для получения гибридного рекомбинантного эритропоэтина человека. Конструируют нуклеотидные последовательности, кодирующие гибридные белки EPO-TR 1,6, EPO-TR 4 и EPO-TR 6. Белок ЕРО-TR 1,6 представляет собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 1,6 белка MUC1 человека. Белок EPO-TR 4 представляет собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 4 белка MUC1 человека. Гибридный белок EPO-TR 6 представляет собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 6 белка MUC1 человека. Гибридные белки получают путем роллерного культивирования в подходящих условиях модифицированной линии клеток млекопитающих СНО, содержащей кодирующую белок нуклеотидную последовательность с последующим выделением гибридного белка из культуральной жидкости. Изобретение позволяет получить гибридный рекомбинантный эритропоэтин человека, обладающий пролонгированным действием. 1. Гибридный белок ЕРО-TR 1,6 на основе рекомбинантного эритропоэтина человека, обладающий пролонгированным действием, соответствующий аминокислотной последовательности SEQ ID NO4 и представляющий собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 1,6 белка MUC1 человека.
2. Гибридный белок EPO-TR 4 на основе рекомбинантного эритропоэтина человека, обладающий пролонгированным действием, соответствующий аминокислотной последовательности SEQ ID NO5 и представляющий собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 4 белка MUC1 человека.
3. Гибридный белок EPO-TR 6 на основе рекомбинантного эритропоэтина человека, обладающий пролонгированным действием, соответствующий аминокислотной последовательности SEQ ID NO6 и представляющий собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 6 белка MUC1 человека.
4. Способ получения гибридного белка по п.п.1 или 2 или 3 путем роллерного культивирования в подходящих условиях модифицированной линии клеток млекопитающих СНО, содержащей кодирующую этот белок нуклеотидную последовательность SEQ ID NO1 или SEQ ID NO2 или SEQ ID NO3 с последующим выделением гибридного белка из культуральной жидкости.
|
Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП "ГосНИИгенетика") (RU)
Основное назначение
Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП "ГосНИИгенетика") (RU)
|
1. Гибридный белок ЕРО-TR 1,6 на основе рекомбинантного эритропоэтина человека, обладающий пролонгированным действием, соответствующий аминокислотной последовательности SEQ ID NO4 и представляющий собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 1,6 белка MUC1 человека.
2. Гибридный белок EPO-TR 4 на основе рекомбинантного эритропоэтина человека, обладающий пролонгированным действием, соответствующий аминокислотной последовательности SEQ ID NO5 и представляющий собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 4 белка MUC1 человека.
3. Гибридный белок EPO-TR 6 на основе рекомбинантного эритропоэтина человека, обладающий пролонгированным действием, соответствующий аминокислотной последовательности SEQ ID NO6 и представляющий собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 6 белка MUC1 человека.
4. Способ получения гибридного белка по п.п.1 или 2 или 3 путем роллерного культивирования в подходящих условиях модифицированной линии клеток млекопитающих СНО, содержащей кодирующую этот белок нуклеотидную последовательность SEQ ID NO1 или SEQ ID NO2 или SEQ ID NO3 с последующим выделением гибридного белка из культуральной жидкости.
Основное назначение
1. Гибридный белок ЕРО-TR 1,6 на основе рекомбинантного эритропоэтина человека, обладающий пролонгированным действием, соответствующий аминокислотной последовательности SEQ ID NO4 и представляющий собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 1,6 белка MUC1 человека.
2. Гибридный белок EPO-TR 4 на основе рекомбинантного эритропоэтина человека, обладающий пролонгированным действием, соответствующий аминокислотной последовательности SEQ ID NO5 и представляющий собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 4 белка MUC1 человека.
3. Гибридный белок EPO-TR 6 на основе рекомбинантного эритропоэтина человека, обладающий пролонгированным действием, соответствующий аминокислотной последовательности SEQ ID NO6 и представляющий собой рекомбинантный эритропоэтин человека, слитый с фрагментом TR 6 белка MUC1 человека.
4. Способ получения гибридного белка по п.п.1 или 2 или 3 путем роллерного культивирования в подходящих условиях модифицированной линии клеток млекопитающих СНО, содержащей кодирующую этот белок нуклеотидную последовательность SEQ ID NO1 или SEQ ID NO2 или SEQ ID NO3 с последующим выделением гибридного белка из культуральной жидкости.
|
||
|
189
|
Патент 2751234
|
Изобретение относится к области биотехнологии. Предлагается питательная среда, которая содержит следующие компоненты (мг/л): аммоний азотнокислый 200-360, калий азотнокислый 750-1550, кальций азотнокислый 650-800, магний сернокислый 120-250, калий фосфорнокислый 300-370, борная кислота 6,0-6,4, цинк сернокислый 8,0-9,2, калий йодистый 0,075-0,085, натрий молибденовокислый 0,2-0,3, медь сернокислая 0,02-0,03: кобальт хлористый 0,02-0,03, железный(П) комплекс гидроксиэтилидендифосфоновой кислоты 15,2-60,8, миоинозит 100, тиамин гидрохлорид 0,5, пиродоксин гидрохлорид 0,5, никотинамид 0,5; глицин 1000, 6-бензиламинопурин 0,3, сахароза 30000, агар 6000, остальное вода до 1 л. Питательная среда обеспечивает увеличение коэффициента размножения крыжовника сорта «Розовый-2» в 1,36 - 1,82 раза по сравнению со средой Кворина-Лепуавра, при этом в 1,3-2,0 раза увеличивается и средняя длина побегов. Питательная среда для размножения на стадии пролиферации крыжовника сорта «Розовый-2», содержащая аммоний азотнокислый, калий азотнокислый, магний сернокислый, калий фосфорнокислый, комплексное соединение железа(П), борную кислоту, цинк сернокислый, калий йодистый, натрий молибденовокислый, медь сернокислую, кобальт хлористый, кальций азотнокислый, органическую составляющую и воду, отличающаяся тем, что в качестве комплексного соединения железа(П) питательная среда содержит железный(П) комплекс гидроксиэтилидендифосфоновой кислоты Fe(П)HEDP при следующем весовом соотношении компонентов, мг/л:
Аммоний азотнокислый 200-360
Калий азотнокислый 750-1550
Кальций азотнокислый 650-800
Магний сернокислый 120-250
Калий фосфорнокислый 300-370
Борная кислота 6,0-6,4
Цинк сернокислый 8,0-9,2
Калий йодистый 0,075-0,085
Натрий молибденовокислый 0,2-0,3
Медь сернокислая 0,02-0,03
Кобальт хлористый 0,02-0,03
Железный(П) комплекс гидроксиэтилидендифосфоновой кислоты 15,2-60,8
Миоинозит 100
Тиамин гидрохлорид 0,5
Пиридоксин гидрохлорид 0,5
Никотинамид 0,5
Глицин 1000
6-Бензиламинопурин 0,3
Сахароза 30000
Агар 6000
Вода остальное до 1 л
Основное назначение
Изобретение относится к области биотехнологии. Предлагается питательная среда, которая содержит следующие компоненты (мг/л): аммоний азотнокислый 200-360, калий азотнокислый 750-1550, кальций азотнокислый 650-800, магний сернокислый 120-250, калий фосфорнокислый 300-370, борная кислота 6,0-6,4, цинк сернокислый 8,0-9,2, калий йодистый 0,075-0,085, натрий молибденовокислый 0,2-0,3, медь сернокислая 0,02-0,03: кобальт хлористый 0,02-0,03, железный(П) комплекс гидроксиэтилидендифосфоновой кислоты 15,2-60,8, миоинозит 100, тиамин гидрохлорид 0,5, пиродоксин гидрохлорид 0,5, никотинамид 0,5; глицин 1000, 6-бензиламинопурин 0,3, сахароза 30000, агар 6000, остальное вода до 1 л. Питательная среда обеспечивает увеличение коэффициента размножения крыжовника сорта «Розовый-2» в 1,36 - 1,82 раза по сравнению со средой Кворина-Лепуавра, при этом в 1,3-2,0 раза увеличивается и средняя длина побегов. Питательная среда для размножения на стадии пролиферации крыжовника сорта «Розовый-2», содержащая аммоний азотнокислый, калий азотнокислый, магний сернокислый, калий фосфорнокислый, комплексное соединение железа(П), борную кислоту, цинк сернокислый, калий йодистый, натрий молибденовокислый, медь сернокислую, кобальт хлористый, кальций азотнокислый, органическую составляющую и воду, отличающаяся тем, что в качестве комплексного соединения железа(П) питательная среда содержит железный(П) комплекс гидроксиэтилидендифосфоновой кислоты Fe(П)HEDP при следующем весовом соотношении компонентов, мг/л:
Аммоний азотнокислый 200-360
Калий азотнокислый 750-1550
Кальций азотнокислый 650-800
Магний сернокислый 120-250
Калий фосфорнокислый 300-370
Борная кислота 6,0-6,4
Цинк сернокислый 8,0-9,2
Калий йодистый 0,075-0,085
Натрий молибденовокислый 0,2-0,3
Медь сернокислая 0,02-0,03
Кобальт хлористый 0,02-0,03
Железный(П) комплекс гидроксиэтилидендифосфоновой кислоты 15,2-60,8
Миоинозит 100
Тиамин гидрохлорид 0,5
Пиридоксин гидрохлорид 0,5
Никотинамид 0,5
Глицин 1000
6-Бензиламинопурин 0,3
Сахароза 30000
Агар 6000
Вода остальное до 1 л
|
Федеральное государственное унитарное предприятие "Институт химических реактивов и особо чистых химических веществ Национального исследовательского центра "Курчатовский институт" (НИЦ "Курчатовский институт" - ИРЕА) (RU)
Основное назначение
Федеральное государственное унитарное предприятие "Институт химических реактивов и особо чистых химических веществ Национального исследовательского центра "Курчатовский институт" (НИЦ "Курчатовский институт" - ИРЕА) (RU)
|
Питательная среда для размножения на стадии пролиферации крыжовника сорта «Розовый-2», содержащая аммоний азотнокислый, калий азотнокислый, магний сернокислый, калий фосфорнокислый, комплексное соединение железа(П), борную кислоту, цинк сернокислый, калий йодистый, натрий молибденовокислый, медь сернокислую, кобальт хлористый, кальций азотнокислый, органическую составляющую и воду, отличающаяся тем, что в качестве комплексного соединения железа(П) питательная среда содержит железный(П) комплекс гидроксиэтилидендифосфоновой кислоты Fe(П)HEDP при следующем весовом соотношении компонентов, мг/л:
Аммоний азотнокислый 200-360
Калий азотнокислый 750-1550
Кальций азотнокислый 650-800
Магний сернокислый 120-250
Калий фосфорнокислый 300-370
Борная кислота 6,0-6,4
Цинк сернокислый 8,0-9,2
Калий йодистый 0,075-0,085
Натрий молибденовокислый 0,2-0,3
Медь сернокислая 0,02-0,03
Кобальт хлористый 0,02-0,03
Железный(П) комплекс гидроксиэтилидендифосфоновой кислоты 15,2-60,8
Миоинозит 100
Тиамин гидрохлорид 0,5
Пиридоксин гидрохлорид 0,5
Никотинамид 0,5
Глицин 1000
6-Бензиламинопурин 0,3
Сахароза 30000
Агар 6000
Вода остальное до 1 л
Основное назначение
Питательная среда для размножения на стадии пролиферации крыжовника сорта «Розовый-2», содержащая аммоний азотнокислый, калий азотнокислый, магний сернокислый, калий фосфорнокислый, комплексное соединение железа(П), борную кислоту, цинк сернокислый, калий йодистый, натрий молибденовокислый, медь сернокислую, кобальт хлористый, кальций азотнокислый, органическую составляющую и воду, отличающаяся тем, что в качестве комплексного соединения железа(П) питательная среда содержит железный(П) комплекс гидроксиэтилидендифосфоновой кислоты Fe(П)HEDP при следующем весовом соотношении компонентов, мг/л:
Аммоний азотнокислый 200-360
Калий азотнокислый 750-1550
Кальций азотнокислый 650-800
Магний сернокислый 120-250
Калий фосфорнокислый 300-370
Борная кислота 6,0-6,4
Цинк сернокислый 8,0-9,2
Калий йодистый 0,075-0,085
Натрий молибденовокислый 0,2-0,3
Медь сернокислая 0,02-0,03
Кобальт хлористый 0,02-0,03
Железный(П) комплекс гидроксиэтилидендифосфоновой кислоты 15,2-60,8
Миоинозит 100
Тиамин гидрохлорид 0,5
Пиридоксин гидрохлорид 0,5
Никотинамид 0,5
Глицин 1000
6-Бензиламинопурин 0,3
Сахароза 30000
Агар 6000
Вода остальное до 1 л
|
||
|
190
|
Патент 2760740
|
Изобретение относится к области биотехнологии. Предлагается питательная среда, содержащая (мг/л): неорганические соединения из группы: аммоний азотнокислый, калий азотнокислый, кальций хлористый, магний сернокислый, калий фосфорнокислый, борная кислота, калий йодистый, а также комплексы марганца (II), цинка(II), молибдена (VI), меди(П), кобальта(П) с оксиэтилидендифосфоновой кислотой (ОЭДФ), комплекс железа (III) с трилоном Б, и органическую составляющую, включающую миоинозит, тиамин гидрохлорид, пиродоксин гидрохлорид, никотинамид, индолилмасляную кислоту, при следующем весовом соотношении компонентов смеси, мг/л: аммоний азотнокислый 825.0, калий азотнокислый 950.0, кальций хлористый 220.0, магний сернокислый 185.0, калий фосфорнокислый 85.0, борную кислоту 6.2, калий йодистый 0.83, комплексы микроэлементов с оксиэтилидендифосфоновой кислотой: железный(III) 24.5- 27.6, марганцевый 26.4-29.3, цинковый 8.2- 9.1, молибденовокислый 0.33-0.37, медный 0.027-0.030, кобальтовый 0.029 -0.032, а также органическую составляющую, включающую миоинозит 0.5, тиамин гидрохлорид 0.5, пиродоксин гидрохлорид 0.5, индолилмасляную кислоту 0.2, сахарозу 15000, агар-агар 6000 и остальное - вода до 1 л. Предлагаемая питательная среда характеризуется высокой эффективностью для размножения вишни ВЦ-13 in vitro на стадии ризогенеза, которая заключается в обеспечении практически количественной степени укоренения растений-регенерантов с образованием коротких прочных корней, которые легко отмываются. Питательная среда для размножения in vitro косточковой культуры ВЦ-13 (вишня) на стадии ризогенеза, содержащая аммоний азотнокислый, калий азотнокислый, кальций хлористый, магний сернокислый, калий фосфорнокислый, борную кислоту, калий йодистый, а также комплексы железа (III), марганца (II), цинка(II), молибдена (VI), меди(II) и кобальта(II) с оксиэтилидендифосфоновой кислотой и органическую составляющую, включающую миоинозит, тиамин гидрохлорид, пиродоксин гидрохлорид, никотинамид, индолилмасляную кислоту, при следующем весовом соотношении компонентов, мг/л:
• Аммоний азотнокислый 825.0
• Калий азотнокислый 950.0
• Кальций хлористый 220.0
• Магний сернокислый 185.0
• Калий фосфорнокислый 85.0
• Борная кислота 6.2
• Калий йодистый 0.83
• Комплексы микроэлементов с оксиэтилидендифосфоновой кислотой:
• железный(III) 24.5-27.6
• марганцевый 26.4-29.3
• цинковый 8.2-9.1
• молибденовокислый 0.33-0.37
• медный 0.027-0.030
• кобальтовый 0.029-0.032
• Миоинозит, 100.0
• Никотинамид, 0.5
• Тиамин гидрохдорид, 0.5
• Пиродоксин гидрохлорид 0.5
• Индолилмасляная кислота 0.2
• Сахароза 30000
• Агар-агар 6000
• Вода до 1 л
Основное назначение
Изобретение относится к области биотехнологии. Предлагается питательная среда, содержащая (мг/л): неорганические соединения из группы: аммоний азотнокислый, калий азотнокислый, кальций хлористый, магний сернокислый, калий фосфорнокислый, борная кислота, калий йодистый, а также комплексы марганца (II), цинка(II), молибдена (VI), меди(П), кобальта(П) с оксиэтилидендифосфоновой кислотой (ОЭДФ), комплекс железа (III) с трилоном Б, и органическую составляющую, включающую миоинозит, тиамин гидрохлорид, пиродоксин гидрохлорид, никотинамид, индолилмасляную кислоту, при следующем весовом соотношении компонентов смеси, мг/л: аммоний азотнокислый 825.0, калий азотнокислый 950.0, кальций хлористый 220.0, магний сернокислый 185.0, калий фосфорнокислый 85.0, борную кислоту 6.2, калий йодистый 0.83, комплексы микроэлементов с оксиэтилидендифосфоновой кислотой: железный(III) 24.5- 27.6, марганцевый 26.4-29.3, цинковый 8.2- 9.1, молибденовокислый 0.33-0.37, медный 0.027-0.030, кобальтовый 0.029 -0.032, а также органическую составляющую, включающую миоинозит 0.5, тиамин гидрохлорид 0.5, пиродоксин гидрохлорид 0.5, индолилмасляную кислоту 0.2, сахарозу 15000, агар-агар 6000 и остальное - вода до 1 л. Предлагаемая питательная среда характеризуется высокой эффективностью для размножения вишни ВЦ-13 in vitro на стадии ризогенеза, которая заключается в обеспечении практически количественной степени укоренения растений-регенерантов с образованием коротких прочных корней, которые легко отмываются. Питательная среда для размножения in vitro косточковой культуры ВЦ-13 (вишня) на стадии ризогенеза, содержащая аммоний азотнокислый, калий азотнокислый, кальций хлористый, магний сернокислый, калий фосфорнокислый, борную кислоту, калий йодистый, а также комплексы железа (III), марганца (II), цинка(II), молибдена (VI), меди(II) и кобальта(II) с оксиэтилидендифосфоновой кислотой и органическую составляющую, включающую миоинозит, тиамин гидрохлорид, пиродоксин гидрохлорид, никотинамид, индолилмасляную кислоту, при следующем весовом соотношении компонентов, мг/л:
• Аммоний азотнокислый 825.0
• Калий азотнокислый 950.0
• Кальций хлористый 220.0
• Магний сернокислый 185.0
• Калий фосфорнокислый 85.0
• Борная кислота 6.2
• Калий йодистый 0.83
• Комплексы микроэлементов с оксиэтилидендифосфоновой кислотой:
• железный(III) 24.5-27.6
• марганцевый 26.4-29.3
• цинковый 8.2-9.1
• молибденовокислый 0.33-0.37
• медный 0.027-0.030
• кобальтовый 0.029-0.032
• Миоинозит, 100.0
• Никотинамид, 0.5
• Тиамин гидрохдорид, 0.5
• Пиродоксин гидрохлорид 0.5
• Индолилмасляная кислота 0.2
• Сахароза 30000
• Агар-агар 6000
• Вода до 1 л
|
Федеральное государственное унитарное предприятие "Институт химических реактивов и особо чистых химических веществ Национального исследовательского центра "Курчатовский институт" (НИЦ "Курчатовский институт" - ИРЕА) (RU)
Основное назначение
Федеральное государственное унитарное предприятие "Институт химических реактивов и особо чистых химических веществ Национального исследовательского центра "Курчатовский институт" (НИЦ "Курчатовский институт" - ИРЕА) (RU)
|
Питательная среда для размножения in vitro косточковой культуры ВЦ-13 (вишня) на стадии ризогенеза, содержащая аммоний азотнокислый, калий азотнокислый, кальций хлористый, магний сернокислый, калий фосфорнокислый, борную кислоту, калий йодистый, а также комплексы железа (III), марганца (II), цинка(II), молибдена (VI), меди(II) и кобальта(II) с оксиэтилидендифосфоновой кислотой и органическую составляющую, включающую миоинозит, тиамин гидрохлорид, пиродоксин гидрохлорид, никотинамид, индолилмасляную кислоту, при следующем весовом соотношении компонентов, мг/л:
• Аммоний азотнокислый 825.0
• Калий азотнокислый 950.0
• Кальций хлористый 220.0
• Магний сернокислый 185.0
• Калий фосфорнокислый 85.0
• Борная кислота 6.2
• Калий йодистый 0.83
• Комплексы микроэлементов с оксиэтилидендифосфоновой кислотой:
• железный(III) 24.5-27.6
• марганцевый 26.4-29.3
• цинковый 8.2-9.1
• молибденовокислый 0.33-0.37
• медный 0.027-0.030
• кобальтовый 0.029-0.032
• Миоинозит, 100.0
• Никотинамид, 0.5
• Тиамин гидрохдорид, 0.5
• Пиродоксин гидрохлорид 0.5
• Индолилмасляная кислота 0.2
• Сахароза 30000
• Агар-агар 6000
• Вода до 1 л
Основное назначение
Питательная среда для размножения in vitro косточковой культуры ВЦ-13 (вишня) на стадии ризогенеза, содержащая аммоний азотнокислый, калий азотнокислый, кальций хлористый, магний сернокислый, калий фосфорнокислый, борную кислоту, калий йодистый, а также комплексы железа (III), марганца (II), цинка(II), молибдена (VI), меди(II) и кобальта(II) с оксиэтилидендифосфоновой кислотой и органическую составляющую, включающую миоинозит, тиамин гидрохлорид, пиродоксин гидрохлорид, никотинамид, индолилмасляную кислоту, при следующем весовом соотношении компонентов, мг/л:
• Аммоний азотнокислый 825.0
• Калий азотнокислый 950.0
• Кальций хлористый 220.0
• Магний сернокислый 185.0
• Калий фосфорнокислый 85.0
• Борная кислота 6.2
• Калий йодистый 0.83
• Комплексы микроэлементов с оксиэтилидендифосфоновой кислотой:
• железный(III) 24.5-27.6
• марганцевый 26.4-29.3
• цинковый 8.2-9.1
• молибденовокислый 0.33-0.37
• медный 0.027-0.030
• кобальтовый 0.029-0.032
• Миоинозит, 100.0
• Никотинамид, 0.5
• Тиамин гидрохдорид, 0.5
• Пиродоксин гидрохлорид 0.5
• Индолилмасляная кислота 0.2
• Сахароза 30000
• Агар-агар 6000
• Вода до 1 л
|
||